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多组学分析前处理的不二之选——Covaris低温干燥粉碎技术

版权所有,转载请联系基因市场部
2025-07-22

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组织异质性是多组学研究面临的重要挑战。这不仅源于器官本身存在空间各异的分区结构(如大脑)以及肿瘤组织特有的微环境异质性,更因为当采用相邻新鲜冷冻组织块进行不同组学分析时,不同组学层面可能反映的是组织环境的不同局部特征,导致基因变异与其RNA、蛋白质表达及代谢表型之间难以建立可靠关联。此外,小动物模型或珍贵临床活检样本往往量少有限,难以分割出足够的组织块用于全部组学检测,进一步限制了研究的深度与广度。

德国蒂宾根大学的Nicolas Casadei&Christoph Trautwein团队提出了一种创新替代方案——组织低温粉碎与冻干处理,为多组学分析奠定了更可靠的样本基础。其中,Covaris CP02 cryoPREP作为样本处理的核心工具,在技术实现中发挥了关键作用。该研究“Cryogenic mouse tissue homogenization as an alternative to fresh-frozen biopsy use for genomics, transcriptomics, proteomics and metabolomics”已发表于《Scientific Reports》。

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低温粉碎-冻干技术

具体表现





研究团队将健康小鼠的脑、肾、肝组织分为两组处理:一组采用传统的新鲜冷冻(FF)方法,将组织切成小块;另一组则采用低温粉碎-冻干(pulverized-lyophilized, PU)处理——使用Covaris CP02 cryoPREP进行低温粉碎,CP02根据不同组织特性调节击打水平,其中脑的击打水平为2,肝为3,肾为4,将组织粉碎为均一粉末后,冻干样本并分装用于后续各类组学分析。通过对比两种方法的组学分析结果,验证低温粉碎-冻干方法的有效性。

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图1-1.新鲜冷冻(FF)和低温粉碎-冻干(PU)方法的实验流程设置



低温粉碎-冻干方法的显著优势




显著降低生物重复异质性

多组学数据均证实,低温粉碎-冻干处理可大幅减少样本异质性:

  • 基因组学中,低温粉碎-冻干处理的脑组织的DNA甲基化重复样本间聚类更紧密,异质性显著低于新鲜冷冻样本(图2a、b);

  • 转录组学中,低温粉碎-冻干处理的脑和肝组织重复样本相关性提升,RNA解卷积结果均一性更优(图3a、b、c);

  • 蛋白质组学和代谢组学中,低温粉碎-冻干处理的脑和肝组织重复样本相关性提高,代谢物检测偏差减少(图4a、b;图5a、b)。

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图2-1.新鲜冷冻(FF)与低温粉碎-冻干(PU)处理的脑、肾、肝组织的基因组DNA甲基化状态分析。


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图3.转录组学揭示低温粉碎-冻干(PU)方法降低生物重复间的组织异质性。


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图4.低温粉碎-冻干(PU)处理对蛋白质分析的影响评估。


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图5-1. 新鲜冷冻(FF)和低温粉碎-冻干(PU)处理的脑、肾、肝组织代谢组学分析。



分子特征覆盖度与完整性优异

新鲜冷冻(FF)和低温粉碎-冻干(PU)方法的多组学特征覆盖高度一致:

  • 基因组学和转录组学特征重叠率100%,蛋白质组学和代谢组学达85%-95%(图1b);

  • 脑、肾、肝组织的特征重叠率分别为94%-100%(图1c)、95%-100%(图1d)、94%-100%(图1e),核心分子特征完整保留。

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图1-2.新鲜冷冻(FF)和低温粉碎-冻干(PU)方法在所有组织类型组合(B)及在单个(C)脑、(D)肾和(E)肝组织的特征覆盖和保留能力的对比。


不影响分子完整性与分析性能

低温粉碎-冻干处理对分子结构无破坏,部分指标更优。基因组学、转录组学、蛋白质组学和代谢组学分析显示:

  • RNA完整性、产量及纯度与新鲜冷冻处理相当,仅与组织类型相关(图S2d、e、f);

  • DNA甲基化模式、全基因组测序覆盖度与FF一致(图2c、d、e;图S1b);

  • 低温粉碎-冻干处理的脑和肝组织中糖磷酸的浓度比FF更高(图S4e)。糖磷酸,糖酵解和戊糖磷酸途径(PPP)中间产物,在细胞能量代谢中起着至关重要的作用,对分析前的样本处理高度敏感。

  • 低温粉碎-冻干处理也使得肝组织的腺苷酸能量电荷更高,利于腺苷一磷酸、二磷酸和三磷酸(AMP、ADP、ATP)的长期保存(图5c、d)。


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图S2. RNA测序质量控制及组织制备方法对文库构建性能的影响。新鲜冷冻(FF)和低温粉碎-冻干(PU)处理后的RNA纯度(260/280(d)和 260/230(e))相似,文库大小(f)也相似。


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图2-2.新鲜冷冻(FF)与低温粉碎-冻干(PU)的脑、肾、肝组织的基因组DNA甲基化状态分析。以皮尔逊相关系数(A)和主成分分析(B)可视化样本聚类情况;每个样本均掺入未甲基化的λ噬菌体对照(C)和CpG甲基化的pUC19对照(D)后比较FF与PU方法间的甲基化水平差异和甲基化位点覆盖度(E)。


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图S1b. 新鲜冷冻(FF)与低温粉碎-冻干(PU)样本全基因组测序的错误率Q值。


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图S4e. 基于液相色谱-质谱(LC-MS)的代谢物鉴定揭示:脑组织和肝脏低温粉碎-冻干(PU)样本中糖酵解代谢物保留率相对高于新鲜冷冻(FF)组织,而肾脏中两种样本处理方式的糖酵解代谢物总量相当。


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图5-2.新鲜冷冻(FF)与低温粉碎-冻干(PU)处理的脑、肾、肝组织代谢组学分析。



总结



研究证实,基于Covaris CP02 cryoPREP的低温粉碎-冻干技术,不仅能保留关键分子特征的覆盖度和质量,还能减少生物学重复间的异质性,为多组学分析提供均质化基础。该方法提升了数据的可重复性,便于样本运输和储存,尤其适用于样本量有限的情况,为多组学研究开辟了更可靠、高效的路径,在癌症研究等依赖精准多组学数据的领域具有重要应用价值。


Covaris CP02 cryoPREP的核心价值

1

精准适配组织特性

通过调节击打水平(2-4级),针对脑、肝、肾的不同结构特点进行针对性粉碎,确保将组织粉碎为均一的粉末,避免了因粉碎不均导致的样本偏差,为后续均质化分析奠定基础。

2

 保障样本处理效率

该设备能高效地将完整组织(如肝叶、左肾、左脑半球)粉碎,结合冻干处理后可制备出约10mg的干粉,等分后用于后续分析,简化了样本制备流程。

3

 支持多组学整合

经CP02处理后的样本,可同时满足基因组学、转录组学、蛋白质组学和代谢组学的分析需求,无需为不同组学重复处理样本,减少了样本损失和操作误差,尤其适合样本量有限的研究场景。

更多Covaris CP02 cryoPREP文献:

[1] A proteogenomic analysis of cervical cancer reveals therapeutic and biological insights (2024). Nature Communications volume 15. https://www.nature.com/articles/s41467-024-53830-0

[2] Liu, Qian et al. Proteogenomic characterization of small cell lung cancer identifies biological insights and subtype-specific therapeutic strategies(2024). Cell, Volume 187, Issue 1, 184 - 203.e28. https://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S0092-8674(23)01335-1

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