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​【文章精读】 Cell Genomics|多患者靶向单细胞DNA测序重建乳腺癌突变谱系

版权所有,转载请联系基因市场部
2022-12-16

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关键词:三阴性乳腺癌,肿瘤异质性,单细胞DNA测序,多患者靶向Panel(MPT Panel)
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期刊:Cell Genomics
课题组:MD安德森癌症中心Nicholas E. Navin实验室



研究亮点


  • 开发出多患者靶向单细胞DNA Panel方法流程,即利用WES测定多患者的突变谱针对性定制化单细胞DNA测序Panel(Multi-Patient Target Panel,MPT Panel),经济高效地完成对特定队列的单细胞DNA测序和突变谱系分析。

  • 对未经富集的细胞核进行Tapestri单细胞DNA测序结果与对经过FACS富集的肿瘤细胞核的Bulk测序分析析得到的CNV和突变结果具有高度一致性。

  • 由于无法准确评估共突变,通过WES的等位基因突变频率(VAF)推测克隆结构难以准确推断克隆结构。

  • 揭示出三阴性乳腺癌患者的突变谱系并鉴定出早期的突变以及CNV事件。


研究背景


三阴性乳腺癌(TNBC)是侵袭性极强的乳腺癌亚型,缺少雌激素受体(ER)、雄激素受体(PR)和HER2的表达,近一半的患者会对化疗产生耐药,并发生远端转移,因此这类患者预后较差。TNBC具有的显著特征是大范围的拷贝数变异(CNV)和TP53突变。之前的研究已经揭示TNBC呈现间断拷贝数演化(PCNE),大量CNV事件在进展的最初阶段短暂发生爆发式进化。然而TNBC进展过程中基因突变的时间和动态变化尚未被充分解析。增加对肿瘤内异质性知识的积累对于TNBC患者的临床诊断和治疗非常重要,尤其是在选择靶向治疗手段的时候。

单细胞DNA测序技术已经被广泛应用于解析瘤内异质性。低通量低深度的单细胞全基因组扩增(WGA)帮助我们在全基因组范围内寻找CNV事件,然而分析突变需要更高的测序深度和对特定位点的均一覆盖,需要靶向的高通量单细胞DNA测序。由于基因组区域过大,为了能经济高效利用单细胞DNA测序数据,本研究意在通过WES的测序得到的体细胞突变构建多患者靶向单细胞DNA Panel(Multi-Patient-Targeted Panel),进而分析TNBC的克隆结构和突变谱系。


研究方案设计

  • 患者选择:五位女性三阴性乳腺癌患者,患者临床信息如下


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  • 样本类型:快速冰冻的肿瘤组织和对应的癌旁组织
  • 实验方法

1)低深度单细胞WGS:对经过FACS分选的肿瘤来源的非整倍体DAPI染色大于2N的单个细胞核进行低深度单细胞WGS,分析拷贝数变异(CNV)。

(2)高深度的WES:对经过FACS富集的肿瘤细胞核和配对的组织进行平均测序深度为107x全外显子组测序,分析患者的体细胞突变。
(3)针对WES测序分析出的突变在Tapestri Designer进行单细胞DNA Panel设计,得到包含有330个扩增子,长度在125~190bp之间的靶向多患者的单细胞DNA测序Panel。
(4)对未经分选的肿瘤细胞核进行单细胞DNA测序,分析单细胞内的突变和CNV变化,并进行克隆结构、突变谱系等分析。
(5)比较单细胞DNA与Bulk测序方法得到的分析结果。

  • 分析细胞数量:靶向单细胞DNA测序分析得到23,500个细胞,平均每个患者得到4,700个单细胞分析结果。


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图1: 多患者靶向单细胞DNA测序流程图(Modified from Figure 1)


研究结果

1. Bulk外显子组测序分析TNBC变异
研究方法:为实现肿瘤细胞进行富集,对从快速冰冻组织中分离出细胞核悬液进行DAPI染色,并通过荧光激活细胞分选术(FACS)对倍型在2.65~3.7 (N) 的非整倍体肿瘤细胞核进行富集(图2A)。对富集后的细胞进行低深度WGS来分析CNV。此外还使用WES分析富集后的肿瘤细胞核以及对应的癌旁组织DNA以得到体细胞突变结果。
研究发现:WGS分析发现在这五例样本中全基因范围均存在广泛的CNV变化,包括驱动基因MYC的扩增和抑癌基因TP53的拷贝数缺失(图2B)。WES分析得到患者的体细胞突变,平均每个患者66个突变,突变频率在富集后的肿瘤细胞中分布在 0.1%~99%,其中TN4和TN5表现出高的肿瘤突变负荷,其中大部分为错义突变(图2C和E)。
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图2: Bulk测序对TNBC肿瘤的变异分析结果
2.多患者靶向单细胞DNA测序分析TNBC肿瘤克隆结构
研究方法:针对WES分析得到的330个突变设计靶向单细胞DNA测序Panel,并对未经分选的肿瘤单细胞核悬液在Tapestri上完成文库构建,进行单细胞SNV、CNV分析,并根据细胞的SNV和CNV进行聚类分析,绘制UMAP结果,并使用邻接法构建进化树。

研究发现:TN4和TN2为多克隆肿瘤。TN4细胞中分析出四个克隆群,包括三个肿瘤克隆和一个正常二倍体细胞的克隆(图3A)。在三个肿瘤克隆群中均有包括TP53基因在内的15个基因的纯和突变。单细胞CNV分析发现了GRIN3A、DMKN和IGSF10的扩增,并发现NOTCH3和15个纯和突变变基因存在拷贝数缺失。为重现肿瘤进化过程中SNV和CNV的获得顺序,根据突变谱构建出邻接法进化树(NJ tree),并显示出三个主要的分支点:最近克隆祖先(MRCA)、A1和A2。c3克隆距离MRCA最近,同时含有最少突变(n=33),分枝进化得到的c2和c1克隆分别增加8个和28个突变。有趣的是在三个克隆之外没有发现处于中间的渐进演化出的克隆。TN2肿瘤中分析出19个突变和三个克隆群。与TN4相似,TN2也没有检测到处于两个肿瘤克隆之间的克隆。

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图3: 两个多克隆肿瘤克隆结果和进化树分析(左右滑动查看完整结果)


TN1、TN3和TN5三个肿瘤均为单个肿瘤克隆,大部分的突变存在在所有的肿瘤克隆中(突变数目:11~47)。此外,在TN5中检测到少量低频突变,可能是在肿瘤进展中后期谱系事件。


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图4: 三个单克隆肿瘤的克隆异质性和突变谱系分析


3. 比较bulk测序和靶向单细胞DNA测序结果

研究方法:针对单细胞WGS的数据和单细胞MPT的数据分别整合为“pseudo-bulk”数据,进行CNV分析比较。相似的,将WES检测结果与单细胞MPT的“pseudo-bulk”分析出的突变VAF进行对比分析。对于克隆结构的分析比较中,WES的VAF结果使用PyClone2进行克隆结构推测,与单细胞DNA测序得到的克隆结构进行比较。

研究发现:CNV的比较显示Pearson相关系数显示高相关值(平均值=0.871),表明跨细胞合并单细胞reads数据,准确反映了pseudo-WGS的CNV结果。值得注意的是,所有高水平的基因扩增均被单细胞MPT测序检出(图5A)。

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图5A:WGS与单细胞DNA测序检测CNV结果比较

对于等位基因突变频率(VAF)的分析结果显示,WES和单细胞测序两个数据集之间VAF的Pearson相关系数在5名患者中显示出高度相关性(平均值=0.876),表明两者结果高度一致。

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图5B:WES与单细胞DNA测序检测突变结果比较

利用PyClone2对WES分析的突变VAF进行克隆结构的分析,结果显示PyClone2经常高估每个肿瘤中存在的亚克隆数量:其中两个单克隆TNBC肿瘤(TN1、TN5)被估计有 3 个亚克隆。对于这两种多克隆肿瘤,Pyclone2在TN4的外显子组数据中估计了更多的亚克隆(单细胞3个,WES为5个)和TN2(单细胞2个,WES为3个)。这些数据突出了基于Bulk测序得到的VAF推断克隆结构的挑战和不准确性,而单细胞突变数据可以准确解析克隆结构。

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图5C:WES推断出与单细胞DNA测序测得的肿瘤克隆结构比较

结论与讨论

该研究报道了通过WES结果进行患者队列进行靶向单细胞DNA测序分析的方法,并成功完成5例三阴性乳腺癌患者的克隆结构和突变谱系分析。单细胞DNA测序结果与bulk WGS和WES的分析结果不仅仅具有高度一致性,多患者靶向单细胞DNA测序(MPT scDNA-seq)能够在不经过分选的肿瘤细胞中高灵敏度地同时检测SNV和CNV。相比于WES推测克隆结构的不准确性,scDNA-seq能够直接、准确测定肿瘤克隆组成,强调了scDNA-seq在分析实体瘤克隆演化和结构的重要价值。

结果显示出,三阴性乳腺癌患者之前巨大的异质性,对于单个患者,存在单克隆和多克隆的不同结构。通过单细胞DNA测序分析出早期发生的主干变异,数据进一步表明,突变也可能在短时间内同时发生,随后是稳定的克隆扩增,形成患者的肿瘤肿块。研究意外发现,在克隆之间存在非常有限的渐进进化中间体的突变。这些数据意味着两种可能性:(1)突变是在短时间的进化中同时获得的,并且在这些事件之外的突变率非常低;(2)存在大的选择性扫描,导致优势克隆胜过其他克隆。根据本次单个时间点的研究结果,研究者无法准确区分这两种情况。

来的重要方向将包括应用MPT单细胞测序研究早期乳腺癌,如非典型导管增生(ADH)或导管原位癌(DCIS),以更好地了解突变爆发和在更大患者队列中引发乳腺癌的早期事件。此外,将药物反应、生存和进展的临床数据与肿瘤内的数量联系起来也很重要。

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